ANALISIS DE LA ACTIVIDAD ANTIBACTERIANA DE FRACCIONES DE HEMOLINFA DE LARVAS DE INSECTO G. mellonella CONTRA S. aureus

Autores/as

  • Olga Lucia Gutierrez Universidad del Antioquia
  • Beatriz Henao Murillo universidad de Antioquia
  • Carlos Pelaez Jaramillo Universidad de Antioquia
  • Edwin Patiño Gonzalez Universidad de antioquia

Palabras clave:

G. mellonella, S. aureus, fracciones, hemolinfa, RP-HPLC, SDS-PAGE.

Resumen

CarloEl trabajo tiene como objetivo inducir, aislar y evaluar la actividad antibacterial en Staphylococcus aureus (S. aureus) de fracciones derivadas de la hemolinfa total de la larva Galleria mellonella (G. mellonella). Las moléculas naturales antimicrobianas en insectos son la respuesta de la inmunidad innata contra patógenos. Las fracciones de hemolinfa de G. mellonella fueron purificadas por cromatografía. S. aureus se usó como modelo para evaluar las diferentes fracciones. Una zona de inhibición de crecimiento evidenció la actividad antibacterial. Como conclusión, S. aureus fue susceptible a dos fracciones de la hemolinfa.

Métodos: El trabajo descrito fue hecho con larvas de G. mellonella del último estadio de desarrollo y el peso promedio de las larvas estuvo entre 270 ± 30 mg. Las larvas inmunizadas fueron inyectadas con una suspensión de la bacteria S. aureus. Como control, se usaron larvas inoculadas con PBS o larvas no tratadas. El extracto metanolico de la hemolinfa de G. mellonella fue fraccionado por SPE y RP-HPLC, y las fracciones resultantes fueron almacenadas a -70ºC. El ensayo de actividad antibacteriana de cada fracción fue determinado por los tamaños de las zonas de inhibición del crecimiento de S. aureus alrededor de discos de papel filtro impregnados con cada una de las fracciones de hemolinfa. El peso molecular de las fracciones de hemolinfa fue determinado por SDS-PAGE.

 

Resultados: Los análisis de cromatografía mostraron que en la hemolinfa inmunizada se incrementaron algunos componentes proteicos. El método en medio líquido demostró que la hemolinfa inmunizada inhibió el crecimiento visible de S. aureus. Las fracciones purificadas de hemolinfa inmunizada consistieron de diferentes bandas desde 37 hasta por debajo de la banda de 6 kDa por SDS-PAGE. Dos fracciones separadas POR RP-HPLC de la hemolinfa infectada mostraron actividad antibacterial contra la especie S. aureus.

 

Conclusiones: Fue posible inducir la producción de péptidos antimicrobianos en la hemolinfa de las larvas de G. mellonella. Se pudo demostrar con los resultados de inhibición en medio líquido y por el método de difusión en discos de filtro que la actividad antibacteriana observada en la hemolinfa fue debido a la inmunización de las larvas. Después del proceso de purificación se pudo detectar en la hemolinfa de larvas inmunizadas una fracción entre 1-10 kDa con péptidos antibacterianos.


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Biografía del autor/a

Olga Lucia Gutierrez, Universidad del Antioquia

Quimica Farmaceutica

Universidad de Antioquia

Beatriz Henao Murillo, universidad de Antioquia

Docente

Universidad de Antioquia

Edwin Patiño Gonzalez, Universidad de antioquia

Docente

Dpto de Quimica

Universidad de Antioquia

Citas

Al., L.G.E. (2010) Antibacterial Potential of Haemolymph and Aqueous Extraction of Red Velvet Mite, T.Grandissimum. J Biomed Sci Res 2 : 250–253.

B, V.P.H., Y, S.K.B., and Kumar, S. (2013) Isolation and partial purification of antimicrobial peptides / proteins from dung beetle , onthophagus taurus immune hemolymph. 2: 2414–2418.

Benson, M.A., Ohneck, E.A., Ryan, C., Alonzo, F., Smith, H., Narechania, A., et al. (2014) Evolution of hypervirulence by a MRSA clone through acquisition of a transposable element. Mol Microbiol 93: 664–81.

Burk, D.L., and Berghuis, A.M. (2002) Protein kinase inhibitors and antibiotic resistance. Pharmacol Ther 93: 283–292.

Campagna, S., Saint, N., Molle, G., and Aumelas, A. (2007) Structure and mechanism of action of the antimicrobial peptide piscidin. Biochemistry 46: 1771–8.

Casanova-Torres, Á., and Goodrich-Blair, H. (2013) Immune Signaling and Antimicrobial Peptide Expression in Lepidoptera. Insects 4: 320–338.

Cohen, M.L. (1992) Epidemiology of drug resistance: implications for a post-antimicrobial era. Science 257: 1050–5.

Edwards, B., Andini, R., Esposito, S., Grossi, P., Lew, D., Mazzei, T., et al. (2014) Treatment options for methicillin-resistant Staphylococcus aureus (MRSA) infection: Where are we now? J Glob Antimicrob Resist 2: 133–140.

Fischbach, M.A., and Walsh, C.T. (2009) Antibiotics for emerging pathogens. Science 325: 1089–1093.

Gillespie, J.P., Kanost, M.R., and Trenczek, T. (1997) Biological mediators of insect immunity. Annu Rev Entomol 42: 611–43.

Lemaitre, B., and Hoffmann, J. (2007) The Host Defense of Drosophila melanogaster.

Lowy, F.D. (2003) Antimicrobial resistance: the example of Staphylococcus aureus. J Clin Invest 111: 1265–73.

Luplertlop, N., Surasombatpattana, P., Patramool, S., Dumas, E., Wasinpiyamongkol, L., Saune, L., et al. (2011) Induction of a peptide with activity against a broad spectrum of pathogens in the Aedes aegypti salivary gland, following Infection with Dengue Virus. PLoS Pathog 7: e1001252.

Myriapoda, D. (2009) Soil organisms. 81: 413–429.

Ryan, L., Lamarre, B., Diu, T., Ravi, J., Judge, P.J., Temple, A., et al. (2013) Anti-antimicrobial peptides: folding-mediated host defense antagonists. J Biol Chem 288: 20162–72.

Schoofs, L., Holman, G.M., Hayes, T.K., Nachman, R.J., and Loof, A. De (1990) Locustatachykinin I and II, two novel insect neuropeptides with homology to peptides of the vertebrate tachykinin family. FEBS Lett 261: 397–401.

Shai, Y. (2002) Mode of action of membrane active antimicrobial peptides. Biopolymers 66: 236–48.

Theuretzbacher, U. (2013) Global antibacterial resistance: The never-ending story. J Glob Antimicrob Resist 1: 63–69.

Uttenweiler-Joseph, S., Moniatte, M., Lagueux, M., Dorsselaer, A. Van, Hoffmann, J.A., and Bulet, P. (1998) Differential display of peptides induced during the immune response of Drosophila: a matrix-assisted laser desorption ionization time-of-flight mass spectrometry study. Proc Natl Acad Sci U S A 95: 11342–7

Verleyen, P., Baggerman, G., D’Hertog, W., Vierstraete, E., Husson, S.J., and Schoofs, L. (2006) Identification of new immune induced molecules in the haemolymph of Drosophila melanogaster by 2D-nanoLC MS/MS. J Insect Physiol 52: 379–388.

Zdybicka-Barabas, A., and Cytryńska, M. (2011) Involvement of apolipophorin III in antibacterial defense of Galleria mellonella larvae. Comp Biochem Physiol B Biochem Mol Biol 158: 90–8.

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Publicado

2015-11-11

Cómo citar

Gutierrez, O. L., Henao Murillo, B., Pelaez Jaramillo, C., & Patiño Gonzalez, E. (2015). ANALISIS DE LA ACTIVIDAD ANTIBACTERIANA DE FRACCIONES DE HEMOLINFA DE LARVAS DE INSECTO G. mellonella CONTRA S. aureus. Revista Tumbaga, 1(9). Recuperado a partir de http://revistas.ut.edu.co/index.php/tumbaga/article/view/647

Número

Sección

Ciencias - Quimicas